Investigación y Desarrollo I+D

El Laboratorio de Toxinas Marinas ha sido líder en investigación en el ámbito de la toxicología marina en el país, contribuyendo en la formación de profesionales y técnicos a nivel nacional e internacional (tesis de Pregrado y Posgrado) y en la capacitación de profesionales de distintos países latinoamericanos, apoyando la consolidación de nuevos laboratorios de toxinas marinas en la región. Los resultados de investigación y desarrollo de este Laboratorio han fortalecido los programas nacionales de vigilancia y generado tecnologías y estrategias para mitigar los impactos de las floraciones de algas nocivas desde una localización estratégica en el sur de Chile. Ambos laboratorios reúnen 24 personas entre académicos, profesionales, co-investigadores de proyectos, estudiantes tesistas, técnicos, analista de proyecto y secretarias.

 

PROYECTOS DE INVESTIGACIÓN 

  • Proyecto MR10i1002 FONDEF-BID-CONICYT. “Desarrollo, implementación y validación de método analítico HPLC-FD para la identificación y cuantificación de toxinas lipofílicas marinas” (2011-2013). Director del proyecto. Prof. Américo López.
  • Proyecto FONDEF D08I197 “Ciberespacios para Fortalecer el Aprendizaje de las Ciencias Básicas en la Enseñanza Media Técnico-Profesional” (2009-2012).
  • Proyecto IAEA TC INT/7/017 “Providing Coordinated Support in the Use of Receptor Binding Assays to Address Impacts of Harmful Algal Toxins in Seafood” (2009-2011) (co-investigador). Este proyecto financia un AOAC International Collaborative Study: Determination of PSP in Shellfish by Receptor Binding Assay.
  • Proyecto (IAEA) ARCAL RLA/7/014 “Designing and Implementing Systems for Early Warning and Evaluation of the Toxicity of Harmful Algal Blooms in the Caribbean Region, Applying Advanced Nuclear Techniques, Radioecotoxicological Evaluations and Bioassays” (2009-2012).
  • Proyecto CORFO Innova 07CN13 PPD-240. “Desarrollo Científico-Tecnológico para la Producción Intensiva de Semillas de Chorito (Mytilus chilensis) Mejoradas Genéticamente para Tasa de Crecimiento y Depleción de la Toxina de Marea Roja: I Etapa. (2008-2011) U Austral y UCHILE.
  • Proyecto FONDEF 2-37 (1994-1997) “Tecnologías para la Detección Rápida de Toxinas Marinas” UCHILE, IFOP, UMAG, Minsal, Sernapesca.
  • Proyecto Nº FIP 97-48 . “Toxicidad y monitoreo de recursos marinos de importancia comercial en la región de Magallanes”. 1997-1998IFOP, UCHILE.
  • Proyecto Nº D9751008 FONDEF-BID-CONICYT“Transferencia tecnológica para la detección de toxinas marinas y fitoplancton tóxico”. 1999-2000 IFOP, UCHILE.
  • Proyecto IAEA TC-CHI07/009-010 “Application of Receptor Binding Assays for Mapping and Monitoring of Shellfish Poisoning Toxins”. 2002-2005. UCHILE, CCHEN.
  • Proyecto Nº MR02I1004 FONDEF-BID-CONICYT. “Investigación, Tecnologías de la Información y Capacitación Local para apoyar la Toma de Decisiones Sanitarias en Mareas Rojas. 2003-2005.
  • Proyecto Nº AQ02I1007 FONDEF-BID-CONICYT). “Desarrollo de Tecnologías y Normas para la Detoxificación Toxinas Marinas en Moluscos de Importancia Comercial”. 2003-2006.
  • Proyecto IAEA TC-CHI07/011 “Nuclear and Information Technologies for an Early Warning Red Tide Environmental Observatory (Center for Oceans and Human Health)”. 2007-2009.
  • Proyecto Domeyko de Investigación en Alimentos (2008-2010).Actividad Transversal de Acreditación de Laboratorios Analíticos. Vicerrectoría de Investigación y Desarrollo, Universidad de Chile.
  • Proyecto IAEA TC INT/7/015-016 “Transfer of Receptor Binding Assay for Harmful Algal Toxins” (2008-2010).

 

PUBLICACIONES 

  • Suárez-Isla, B. A. y Guzmán, L. “Floraciones de Algas Nocivas”. Libro de divulgación de la Serie “Orientaciones en Ciencias, Tecnología y Cultura”, Editorial Universitaria, 1999 (2ª reimpresión 2002, 3ª reimpresión 2008) (LIBRO).
  • Uribe, P., Suárez-Isla, B.A. y Espejo, R.T. Ribosomal RNA heterogeneity and identification of toxic dinoflagellate cultures by heteroduplex mobility assay. Journal of Phycology, 35 (4), 884-888 (1999).
  • Suárez-Isla, B.A and Vélez, P. “Paralytic shellfish poisoning (PSP). Biological detection methods”. In: Seafood Toxicity: Mode of Action, Pharmacology and Physiology. Ed. Luis M. Botana, Marcel Dekker Inc., New York, Chapter 9. pp. 187-202 (2000).
  • Amaro, A. M., Alcayaga, C., Marín, I., Loyola, H., Amils, R. and Suárez-Isla, B. A. “Modification of gene expression in response to phosphate stress in a red tide toxic dinoflagellate (Alexandrium catenella)”. The Journal of Physiology, 523: 13 (2000).
  • Vélez, P., Sierralta, J., Alcayaga, C., Fonseca, M., Loyola, H., Johns, D.C., Tomaselli, G.F. and Marban, E. and Suárez-Isla, B.A. “A functional assay for paralytic shellfish toxins that uses recombinant sodium channels”. Toxicon, 39: 929-935 (2001).
  • Chen Z, Alcayaga C, Suarez-Isla BA, O’Rourke B, Tomaselli G, Marban E. A “minimal” sodium channel construct consisting of ligated S5-P-S6 segments forms a toxin-activatable ionophore. J Biol Chem. 2002 277:24653-8.
  • Suárez-Isla, B.A., López, A., Hernández, C., Clèment, A y Guzmán L. “Impacto económico de las floraciones de microalgas nocivas en Chile y datos recientes sobre la ocurrencia de Veneno Amnésico de los Mariscos”. In: Floraciones Algales Nocivas en el Cono Sur Americano. Eds.: Sar, E.A., M.E. Ferrario & B. Reguera. Monografías del Instituto Español de Oceanografía, Vigo (2002), pp. 259-268.
  • López-Rivera, A. Suarez-Isla, B.A., Eilers, P.P., Beaudry, C. G., Hall, S., Fernández-Amandi, M., Furey A. & James K.J. “Improved High-Performance Liquid Chromatographic Method for the Determination of Domoic Acid and Analogues in Shellfish: pH Effect”. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 381: 1540-1545 (2005).
  • Amaro A.M., Fuentes, M.S., Ogalde S.R. Venegas, J.A. & Suarez-Isla, B.A. “Identification and Characterization of Potentially Algal-lytic Marine Bacteria Strongly Associated with the Toxic Dinoflagellate Alexandrium catenella”. Journal of Eukaryotic Microbiology, 52(3), 191-200 (2005).
  • Suarez-Isla, B.A. Paralytic shellfish toxins. Pharmacology and Toxicology. Biological detection methods. In: Seafood and Freshwater toxins. Pharmacology and detection, Chapter 9. Ed. by Luis.M Botana, 2nd Edition. CRC Press-Taylor and Francis Group, LLC, Boca Raton, Florida, 2008.
  • López-Rivera A, Pinto M, Insinilla A, Suárez Isla B.A., Uribe E, Alvarez G, Lehane M, Furey A, James KJ. The occurrence of domoic acid linked to a toxic diatom bloom in a new potential vector: the tunicate Pyura chilensis (piure). Toxicon, 54(6), 754-762 (2009).
  • Valladares, A., Manríquez, G. and Suárez-Isla B.A. Shell shape variation in populations of Mytilus chilensis (Hupe 1854) from Southern Chile: a geometric morphometric approach. Marine Biology, 157,               2731-2738        (2010).
  • Turner, A.D., Hatfield, R.G., Rapkova, M. Higman, W., Algoet, M., Suarez-Isla, B.A., Cordova, M., Caceres, C., van de Riet, J., Gibbs, R., Thomas, K., Quilliam, M. and Lees, D.N. Comparison of AOAC 2005.06 LC official method with other methodologies for the quantitation of paralytic shellfish poisoning toxins in UK shellfish species. Bioanalytical and Analytical Chemistry. 399 (3) 1257-1270 (2010).
  • Suarez-Isla, B.A. Saxitoxin and other paralytic toxins: Toxicological profile. Marine and Freshwater Toxins. Part I. 23-41 (2016).

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